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1.
Rev. Fac. Cienc. Méd. (Córdoba) ; 61(1): 13-19, 2004. ilus, tab
Article in Spanish | LILACS | ID: lil-399770

ABSTRACT

Los últimos avances en genética molecular como así también el desarrollo de estrategias para la prevención y control de las hipoacusias no sindrómicas (HNS), han contribuido al esclarecimiento de las causas hereditarias de las mismas. En este estudio, se seleccionaron 32 familias argentinas con uno (esporádico) o más (familiar) individuos afectados. El análisis genético consistió en la búsqueda de tres genes autosómicos nucleares y uno en el ADN mitocondrial. Estos genes se localizaron en un gran número de casos familiares o esporádicos de sorderas congénitas en Caucásicos. El alelo mutado 35 del G de la conexina 26 (GJB2, locus DFNB1 en 13g12) se presentó en tres familias. Además se investigó el gen que codifica otoferlina (OTOF locus DFNB9 en 2p22-23) encontrándose en dos familias la mutación Q829X en heterocigocidad. También se identificó en una familia portadora heterocigota la deleción de 342 Kb en la conexina 30 (GJB6, locus DFNB1 en 13g12). Por otro lado, no encontramos ningún paciente con la mutación mitocondrial. Debido a que la búsqueda de otras mutaciones es demasiado costosa, nuestro principal objetivo es investigar aquellas mas frecuentes en la población argentina, a fin de desarrollar test simples y específicos para cada una de ellas.


Subject(s)
Humans , Male , Female , Hearing Loss/genetics , Mutation , Argentina , Deafness/diagnosis , Deafness/genetics , Gene Deletion , Genetic Counseling , Hearing Loss, Sensorineural/diagnosis , Hearing Loss, Sensorineural/genetics , Hearing Loss/diagnosis , Pedigree
2.
Acta bioquím. clín. latinoam ; 24(3): 195-201, sept. 1990. tab
Article in Spanish | LILACS | ID: lil-95826

ABSTRACT

A partir de la preparación de fosfatasa alcalina (EC 3.1.3.1) parcialmente purificada con etanol, de plasma de personas con grupo 0, se separaron cuatro fracciones con actividad enzimática, mediante cromatografía en columna de DEAE-celulosa, con gradiente discontinuo de NaCI. También se extrajo fosfatasa alcalina de hígado, hueso y mucosa intestinal humanos, a fin de caracterizar las distintas formas moleculares. el uso de inhibidores (L-fenil-alcalina y urea) y electroforesis en gel de poliacrilamida, permitió identificar las isoenzimas presentes en los extractos de tejidos y en los picos de elución cromatográfica de la enzima de plasma. La isoenzima hepática se encuentra en todas las fracciones. La primera eluye con NaCI 40 mM y puede separarse en dos (IA e IB). Ambas contienen las isoenzimas intestinal y ósea, además de formas parcialmente desializadas de la hepática. La segunda fracción (NaCI 60 mM) contiene exclusivamente fosfatasa alcalina hepática. La tercera (NaCI 200 mM), de alto peso molecular, está compuesta por las isoenzimas ósea, intestinal y hepática. El perfil es muy reproducible. La comparación del cromatograma correspondiente a plasma normal con el de un paciente portador de un tumor con metástasis óseas, muestra notables diferencias, indicando la utilidad diagnóstica del método, ya que permite identificar el órgano de origen, en casos de incremento de fosfatasa alcalina en plasma.


Subject(s)
Humans , Alkaline Phosphatase/blood , Chromatography, Ion Exchange , DEAE-Cellulose , Isoenzymes/isolation & purification , Bone and Bones/enzymology , Bone Diseases/enzymology , Chromatography, DEAE-Cellulose/instrumentation , Chromatography, DEAE-Cellulose/methods , Electrophoresis, Polyacrylamide Gel , Ethanol , Liver/enzymology , Intestines/enzymology , Liver Diseases/enzymology , Neuraminidase , Phenylalanine , Sodium Chloride , Urea
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