ABSTRACT
En Paraguay, así como en las Américas, la leishmaniasis constituye una de las problemáticas de salud pública importante, debido a su complejidad tanto epidemiológica, clínica y biológica, afectando especialmente a los más pobres y en los países en vía de desarrollo. Polygonum punctatum Elliot. pertenece a la familia Polygonaceae, la medicina popular le atribuye varias propiedades, por medio de estudios anteriores se confirma que diferentes extractos de esta planta presentan actividad antibacteriana, antiinflamatoria y antifúngica. En este trabajo, se evaluó la actividad citotóxica del extracto etanólico de Polygonum punctatum de la familia Polygonaceae en concentraciones de 100, 50 y 25 µg/ml en células de macrófagos de ratones, en los cuales no se encontró actividad citotóxica. Además, se evaluó la actividad leishmanicida por medio de estudios experimentales in vitro a concentraciones de 100, 75, 50, 25, 20 y 10 µg/ml frente a tres cepas de parásitos: Leishmania infantum, L. amazonensis y L. braziliensis, en los cuales se observó una actividad de 58 y 56% de lisis de parásitos con el extracto de 100µg/ml frente a las cepas de L. braziliensis y L. infantum, respectivamente y 51% para L. amazonensis. Estos resultados son prometedores, y aportan una base para el desarrollo y búsqueda de nuevos tratamientos para la leishmaniasis, sin embargo, son necesarios estudios posteriores en cuanto a aislamiento e identificación del compuesto y evaluación en modelos animales in vivo.
In Paraguay, as well as in the Americas, leishmaniasis constitutes one of the important public health problems, due to its epidemiological, clinical, and biological complexity, especially affecting the poorest and developing countries. Polygonum punctatum Elliot belongs to the Polygonaceae family, and popular medicine attributes several properties to it. Previous studies confirmed that different extracts of this plant have antibacterial, anti-inflammatory and antifungal activity. In this work, the cytotoxic activity of the ethanolic extract of Polygonum punctatum was evaluated at concentrations of 100, 50 and 25 µg/ml in mouse macrophage cells, in which no cytotoxic activity was found. In addition, the leishmanicidal activity was evaluated through experimental in vitro studies at concentrations 100, 75, 50, 25, 20 and 10 µg/ml against three strains of parasites: Leishmania infantum, L. amazonensis and L. braziliensis. Activities of 58 and 56% of parasite lysis were observed with the 100 µg/ml extract against strains of L. braziliensis and L. infantum, respectively, and 51% for L. amazonensis. These results are promising and provide a basis for the development and search of a new treatment for leishmaniasis. However, further studies are necessary regarding the isolation and identification of the compound and its evaluation in in vivo animal models.
ABSTRACT
La función original de los sistemas CRISPR/Cas es destruir el DNA de virus bacterianos. Este sistema ha evolucionado para identificar y cortar secuencias de diferentes DNA de virus de DNA evitando la infección. En la célula, está compuesto de genes Cas que producen nucleasas guiadas por RNA capaces de cortar el DNA. Si el RNA guía encuentra DNA de un virus con el que se puede emparejar, recluta a la nucleasa Cas9 que lo corta. Este sistema es utilizado in vitro para editar genes basándose en la producción de rupturas de doble cadena y su posterior reparación. Actualmente existen varias plataformas para el diseño de RNAs guía, aunque también es posible realizarlo de forma manual. Los componentes del sistema son entregados a la célula mediante un plásmido o una ribonucleoproteína. En esta revisión nos centraremos en la función original de CRISPR/Cas en procariotas y en cómo los investigadores la han modificado para proporcionar nuevas técnicas de edición de genomas. Discutiremos sobre las ventajas de esta nueva técnica, las formas en que podemos utilizarla y algunas de las limitaciones que aún encontramos en su aplicación
The original function of CRISPR/Cas systems is to destroy the DNA of bacterial viruses. This system has evolved to identify sequences of different DNA viruses and cut them in order to avoid infection. In the cell, the system is made up of Cas genes which produce RNA-guided nucleases capable of cutting DNA. If the guide RNA finds viral DNA with which it can pair up, it recruits the Cas9 nuclease to cut it. This system is used in vitro for gene edition, relying on the production of double-strand breaks and their subsequent repair. Currently, there are several platforms for the design of the guide RNA, and it is also possible to design it manually. The components of the system can be delivered to the cell through a plasmid or through a ribonucleoprotein. In this review we will focus on the original function of CRISPR/Cas in prokaryotes, and in how researchers have modified it in order to provide new genome editing techniques. We will discuss the advantages of this new technique, the ways in which it can be used, and some of the limitations found in its application