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1.
Rev. cient. (Maracaibo) ; 20(5): 506-511, oct. 2010. ilus, graf
Article in Spanish | LILACS | ID: lil-631104

ABSTRACT

Anaplasma marginale causes a disease in cattle characterized by fever, anemia and decrease in milk and meat production. Small ruminants do not show signs of disease when infected, but it has been suggested they could act as reservoirs. Goat and sheep breeding is socially and economically important in arid and semi-arid areas in Venezuela, and these species often share space and food with cattle. The aim of this work was to detect antibodies against Anaplasma spp. in Venezuelan goat and sheep flocks. To accomplish this goal, an indirect ELISA using recombinant MSP5 as antigen of A. marginale was performed. Sera obtained from experimental infection in goat and a hyperimmune sheep serum were used as positive controls. Blood sera were obtained from 45 sheep and 48 goats located in Guárico State, an endemic area to bovine anaplasmosis. After standardization of assay for each species, 80.46% of the sheep and 59.25% of the goat sera showed to have antibodies against MSP5. No signs of clinical disease were detected in sampled animals. These results suggest that small ruminants could harbour A. marginale and consequently may be reservoirs for neighbouring cattle if appropriate vectors are present. The development of clinical diseases caused by A. marginale under stress situations and the existence of other Anaplasma species (e.g. A. ovis) in small ruminants should also be investigated.


Anaplasma marginale ocasiona una enfermedad en los bovinos caracterizada por fiebre, anemia y disminución de la producción de leche y carne. Los pequeños rumiantes generalmente no muestran signos clínicos, por lo que pudieran actuar como reservorio. En Venezuela, los ovinos y caprinos tienen gran importancia económica y socialmente en zonas áridas y semi- áridas e incluso, en muchas ocasiones comparten su espacio y alimento con los bovinos. El objetivo de este trabajo fue detectar anticuerpos contra Anaplasma spp. en rebaños de ovinos y caprinos. Para ello, se estandarizó un ELISA indirecto con la MSP5 recombinante de A. marginale, empleando sueros provenientes de infecciones experimentales en caprinos y un suero hiperinmune ovino como controles positivos. Posteriormente, fueron obtenidos sueros sanguíneos de 45 ovinos y 48 caprinos localizados en una zona endémica a anaplasmosis bovina del estado Guárico. De estos, 80,46% de los ovinos y 59,25% de los caprinos presentaron anticuerpos que reconocieron la MSP5, sin embargo, ninguno de estos animales positivos presentaron signos clínicos de la enfermedad. Estos resultados sugieren que los pequeños rumiantes son portadores de A. marginale y por ende, pueden estar actuando como reservorio de la enfermedad para los bovinos en el caso que se encuentren los vectores apropiados. Por lo tanto, se debe profundizar en los estudios sobre el desarrollo de sintomatología clínica en condiciones de estrés y la existencia de otras especies de Anaplasma (como A. ovis) en los ovinos y caprinos de Venezuela.

2.
Rev. cient. (Maracaibo) ; 19(3): 225-229, mayo-jun. 2009. graf
Article in Spanish | LILACS | ID: lil-548498

ABSTRACT

Uno de los problemas más comunes del trabajo con Trypanosoma vivax, es la supervivencia y criopreservación de este protozoario, lo cual origina pérdida de aislados de campo y errores en exámenes parasitológicos. Se propone evaluar la supervivencia in vivo en condiciones de campo y criopreservación de T. vivax. Para determinar la supervivencia, la sangre se sometió a temperatura ambiente y refrigeración a 4°C, luego se determinó la sobrevivencia en el tiempo. Para el estudio de criopreservación, se emplearon dos crioprotectores de diferente naturaleza química: glicerol 10 por ciento y DMSO 5 por ciento de concentración final. Además, la criopreservación se realizó bajo tres condiciones de almacenamiento en nitrógeno líquido: 1) fase gaseosa 2) líquida y 3) combinación de ambas. Durante la evaluación de la supervivencia, se observó que la sobrevivencia de T. vivax en sangre refrigerada disminuyó significativamente (P<0,01), en comparación con aquellas sometidas a temperatura ambiente. Sin embargo, la sobrevivencia de éstos últimos comienza a disminuir luego de 6 horas, aunque algunos hemoparásitos permanecieron viables hasta 24 horas post-recolección. Para evaluar la criopreservación, al cabo de dos semanas, se descongelaron los crioviales, se determinó la sobrevivencia, resultando negativas las muestras sometidas a congelamiento directo en fase líquida. Los otros dos métodos empleados, resultaron similares (estadísticamente no significativos), el glicerol 10 por ciento resultó con mayor número de parásitos viables. En conclusión, se determinó que, las muestras infectadas con T. vivax deben evaluarse antes de 8 horas post-recolección y mantenerlas a temperatura ambiente. Por otra parte, el congelamiento debe realizarse en primera instancia en fase gaseosa o combinación gaseosa/líquida, empleando glicerol 10 por ciento. Estos resultados, permiten sugerir la mejor metodología a ser empleada para la supervivencia de los parásitos antes de exámenes parasitológicos...


One of the common problems working with Trypanosoma vivax is its survival and cryopreservation, which originates loss of field isolates and parasitological examinations mistakes. The aim of this paper was to study the best methodologies for in vivo survival under field conditions and cryopreservation of the T. vivax. In order to study complete blood survival of T. vivax, two surviving conditions were tested at: room temperature and refrigeration at 4°C. The result shows that surviving in cooled sampled diminished significantly (P<0.01) compare with room temperature. Nevertheless, surviving of room temperature parasite begins to diminish after 6 hours, although some parasites remained viable up to 24 hours post-harvesting. Cryopreservation studies were made under three liquid nitrogen storage conditions: 1) gaseous phase 2) liquid and 3) gaseous/ liquid phase combination (glycerol 10 percent and DMSO 5 percent, were used as cryoprotectants). After two weeks and defrost the survive of T. vivax from cryovials determined. The result show that: a) direct freezing in liquid phase samples were negative and b) the other two methodology were positive and statistically similar, glycerol 10 percent resulted with the greatest number of viable parasites. In conclusion, these results suggest that the best methodologies for conservation under field conditions, were that the samples infected with T. vivax must be evaluated before 8 hours post-harvesting at room temperature and cryopreservation condition of the T. vivax, must be made in gaseous phase or gaseous/liquid phase combination.


Subject(s)
Cryoprotective Agents/analysis , Cryopreservation/methods , Cryopreservation/veterinary , Freezing , Survival Analysis , Trypanosoma vivax , Veterinary Medicine
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