ABSTRACT
A pesar de ser abundante, la información relacionada con los valores de tironinas circulantes en la trucha arcoiris, es confusa. El presente estudio demuestra la importancia de mantener especies sero-homólgoas durante la medición de tironinas con RIE para eviatar falsos resultados. La utilización de suero homólogo (trucha) libre de tironinas en la curva estándar permite la estandarización de radioinmunoensayos exactos y específcos para cuantificar los niveles circulates de T3 y T4 en 10 microl de suero de trucha arcoiris. El límite de detección fue de 50 pg para ambas tironinas. Los coeficientes de variación inter e intra ensayo fueron menores al 10 por ciento. Los valores promedio para T3 y T4 + - DEM en la población de truchas estudiadas (n=34) fueron 23.6 + - 1.2 y 12.0 + - 2.3 ng/ml respectivamente. Se obsevó una correlación positiva y significativa (p < 0.005) entre el peso corporal y T3 confirmando la participación activa de esta tironina en el proceso de crecimiento.
Subject(s)
Animals , Fishes/physiology , Mexico , Radioimmunoassay/instrumentation , Thyronines/pharmacokinetics , Triiodothyronine/pharmacokinetics , Trout/classification , Trout/metabolismABSTRACT
Se describe un método de tinción pentacrómico que permite identificar los diferentes tipos celulares en tejidos adenohipofisiario humano y de rata y en células dispersas de rata. Esta técnica mostró un grado suficiente de selectividad que hizo posible distinguir 5 tipos celulares: lactotropos (rojos), somatotropos (amarillos), tirotropos (azul intenso), corticotropos (violeta) y gonadotropos (verde). De las células dispersas de rata un 90% del total analizado estuvo representado por los 2 grupos de células acidófilas, mientras que el 10% restante correspondió a: tirotropos 1.7%, corticotropos 1.1% y gonadotropos casi 7.0%. En la estirpe acidófila las proporciones de los dos tipos celulares obtenidas mediante esta tinción (PRL 63.7%, CH 26.7%) fueron comparables a los datos informados en la literatura utilizando métodos inmunohistoquímicos. Cada uno de los cinco grupos de células estudiados fue a su vez subdividido en tres categorías dependiendo de su tamaño. El bajo costo y la selectividad del método permiten proponerlo como de gran utilidad para aquellas instituciones que carecen de instalaciones para realizar estudios inmunocitoquímicos o de microscopía electrónica