Embryonic development of Girardia tigrina (Girard, 1850) (Platyhelminthes, Tricladida, Paludicola) / Desenvolvimento embrionário de Girardia tigrina (Girard, 1850) (Platyhelminthes, Tricladida, Paludicola)

The embryonic development of freshwater triclads is mainly known from studies of species of Dendrocoelum, Planaria, Polycelis, and, more recently, Schmidtea. The present study characterizes the development of Girardia tigrina (Girard, 1850) by means of optical microcopy using glycol methacrylate semi-thin sections. 94 cocoons were collected in the period from laying to hatching, with intervals of up to twenty-four hours. The sequence of morphological changes occurring in the embryo permitted the identification of nine embryonic stages. At the time of cocoon laying, numerous embryos were dispersed among many yolk cells, with a rigid capsule covering the entire cocoon. In the first stage (approx. up to 6 hours after cocoon laying), yolk cells and embryonic cells showed random distribution. Stage II (between 12 and 24 hours after cocoon laying) is characterized by aggregates of blastomeres, which later aggregate forming an enteroblastula. Approximately 2 days after cocoon laying (stage III), formation of the embryonic epidermis and embryonic digestive system took place, the latter degenerating during the subsequent stage. Stage V (until the fourth day) is characterized by the formation of the definitive epidermis. Between 4 and 6 days after laying, organogenesis of the definitive inner organs starts (stage VI). Approximately 14 days after laying (stage IX), formation of the nervous system is completed. At this stage, the embryo shows similar characteristics to those of newly hatched juveniles. The hatching of Girardia tigrina occurs in the period between twelve to twenty-two days after cocoon laying.

O desenvolvimento embrionário dos tricladidos é conhecido, fundamentalmente, por estudos realizados em espécies de Dendrocoelum, Planaria, Polycelis e, mais recentemente, Schmidtea. O presente estudo descreve o desenvolvimento embrionário de Girardia tigrina (Girard, 1850), a partir de análises realizadas em cortes histológicos seriados e semifinos de glicol-metacrilato, ao microscópio óptico. Noventa e quatro casulos foram coletados no período entre a postura e a eclosão, em intervalos de até vinte e quatro horas. A seqüência das modificações morfológicas no embrião permitiu a identificação de nove estágios embrionários. Na postura dos casulos, envoltos por uma cápsula rígida, observam-se numerosos embriões dispersos entre grande quantidade de células vitelinas. No estágio I (aproximadamente até 6 horas após a postura), as células vitelinas e as embrionárias mostram uma distribuição aleatória. O estágio II (entre 12 e 24 horas após a postura) caracteriza-se pela formação de agrupamentos de blastômeros, os quais posteriormente formam uma enteroblástula. Aproximadamente dois dias após a postura (estágio III), ocorre a formação da epiderme e do sistema digestivo embrionário, sendo que este último degenera no estágio seguinte. O estágio V (até o quarto dia após a postura) caracteriza-se pela formação da epiderme definitiva. Entre o quarto e o sexto dia posteriores à postura, começa a organogênese dos órgãos internos definitivos (estágio VI). Aproximadamente catorze dias após a postura (estágio IX), completa-se a formação do sistema nervoso. Neste estágio, o embrião já apresenta características similares aos espécimes juvenis. A eclosão de Girardia tigrina ocorre entre doze e vinte e dois dias após a postura dos casulos.

Histological processing techniques for the study of Dugesiidae development (Platyhelminthes, Tricladida, Paludicola)

The objective of the present study was to adapt techniques for the histological processing of Dugesiidae cocoons for the study of embryo development. The cocoons were fixed with formalin, SUSA, Bouin or paraformaldehyde/glutaraldehyde and subsequently embedded in Paraplast or glycol methacrylate (Historesin). Paraplast embedding yielded reasonable results only after the cocoon was perforated or fixed for a prolonged period of time using softening techniques with acid solutions. When the SUSA or Bouin fixative and Historesin embedding techniques were used the results were good for light microscopical analysis. Fixation with paraformaldehyde/glutaraldehyde and glycol methacrylate embedding resulted in better tissue preservation, and did not require prolonged fixation or softening techniques. Thus, we suggest this technique for light microscopical analysis of embryo development in Dugesiidae