ABSTRACT
Hancornia speciosa Gomes is a fruit species belonging to the Apocynaceae family and holds social, cultural and economic potential mostly due to its use in composition of many food industry products and the consumption its fruits in natura. Several aspects regarding their propagation need further studies, since the species is undergoing a continuous process of domestication. The objective was to obtain an in vitro protocol for indirect organogenesis and rooting with subsequent acclimatization of H. speciosa plants. To obtain indirect organogenesis, internodal segments were inoculated in WPM culture medium gelled with 7 g L-1 agar, added with 30 g L-1 sucrose, 0.4 g L -1 PVP, and supplied with different concentrations of 2,4-D (0.0; 2.46; 7.38; 12.30; and 17.22 µM), BAP (0.0; 4.92; 9.84; 14.76; and 19.68 µM), and TDZ (0.0; 4.92; 9.84; 14.76; and 19.68 µM). For the in vitro rooting, shootings with approximately 6.0 cm diameter length kept for 15 days in WPM medium with no plant growth regulator and, afterwards, subjected to treatments with different auxins (Control; 9.84 µM IBA; 9.84 µM NAA; and 9.84 µM IAA) as well as the combination among them, in order to verify their effects on percentage of rooting (%), number of roots, and average length of the largest root (cm). The formation of calluses was observed in all explants subjected to the concentrations of the regulators tested. The highest shooting regeneration occurred with 7.38 µM 2,4-D (73%). The highest percentage of shoot rooting (80%) and roots with the largest length (1.3 cm) were found in the culture medium with the combination of 4.92 µM NAA and 4.92 µM IBA. The in vitro regeneration of H. speciosa is feasible. The acclimatization of rooted shoots in Trospstrato® was accomplished with successful and 100% survival of plant material was observed during this stage.
Hancornia speciosa Gomes é uma frutífera pertencente à família Apocynaceae e possui grande potencial social, cultural e econômico, principalmente devido à utilização de seus frutos na composição de diversos produtos do setor alimentício e para consumo in natura. Vários aspectos de sua propagação necessitam de maiores estudos, uma vez que a espécie passa por um contínuo processo de domesticação. Objetivou-se obter um protocolo de organogênese indireta e de enraizamento in vitro, com posterior aclimatização das plantas de H. speciosa. Para a obtenção de organogênese indireta, segmentos internodais foram inoculados em meio de cultivo WPM gelificado com ágar 7 g L-1, acrescido de 30 g L-1 de sacarose, 0,4 g L-1 de PVP e suplementado com diferentes concentrações de 2,4-D (0,0; 2,46; 7,38; 12,30 e 17,22 µM), BAP (0,0; 4,92; 9,84; 14,76 e 19,68 µM) e TDZ (0,0; 4,92; 9,84; 14,76 e 19,68 µM). Para o enraizamento in vitro, foram utilizadas brotações com aproximadamente 6,0 cm de comprimento, mantidas por 15 dias em meio WPM isento de fitorreguladores e, em seguida, submetidas a tratamentos com diferentes auxinas (Controle; 9,84 µM de AIB; 9,84 µM de ANA e 9,84 µM de AIA), bem como as combinações entre estes reguladores (4,92 µM AIA + 4,92 µM AIB; 4,92 µM ANA + 4,92 µM AIB; 4,92 µM ANA + 4,92 µM AIA). Foi observada formação de calos em todos os explantes submetidos às concentrações dos reguladores testados. A maior regeneração de brotação ocorreu com 7,38 µM de 2,4-D (73%). Maior porcentagem de enraizamento das brotações (80%) e raízes com maior comprimento (1,3 cm) foi verificada em meio de cultivo contendo a combinação de 4,92 µM de ANA e 4,92 µM de AIB. É possível a regeneração in vitro de H. speciosa. A aclimatização foi realizada com sucesso, com 100% de sobrevivência das plantas.