Expression of the hemagglutinin HA1 subunit of the equine influenza virus using a baculovirus expression system / Expresión de la subunidad HA1 del virus de influenza equina utilizando un sistema de expresión en baculovirus

Equine influenza virus is a leading cause of respiratory disease in horses worldwide. Disease prevention is by vaccination with inactivated whole virus vaccines. Most current influenza vaccines are generated in embryonated hens' eggs. Virions are harvested from allantoic fluid and chemically inactivated. Although this system has served well over the years, the use of eggs as the substrate for vaccine production has several well-recognized disadvantages (cost, egg supply, waste disposal and yield in eggs). The aim of this study was to evaluate a baculovirus system as a potential method for producing recombinant equine influenza hemagglutinin to be used as a vaccine. The hemagglutinin ectodomain (HA1 subunit) was cloned and expressed using a baculovirus expression vector. The expression was determined by SDS-PAGE and immunoblotting. A high yield, 20 μg/ml of viral protein, was obtained from recombinant baculovirus-infected cells. The immune response in BALB/c mice was examined following rHA1 inoculation. Preliminary results show that recombinant hemagglutinin expressed from baculovirus elicits a strong antibody response in mice; therefore it could be used as an antigen for subunit vaccines and diagnostic tests.

El virus de la influenza equina es una de las principales causas de enfermedad respiratoria en caballos de todo el mundo. La prevención de la enfermedad es a través de la vacunación con vacunas a virus inactivado. La mayoría de las vacunas se producen en huevos embrionados, de los cuales los viriones son cosechados del líquido alantoideo e inactivados químicamente. Aunque este sistema ha servido bien durante años, el uso de huevos como sustrato para la producción de vacuna presenta varias desventajas bien reconocidas (costo, provisión de huevos, manejo de los residuos, rinde por huevo). El objetivo del presente trabajo fue evaluar preliminarmente un sistema de expresión en baculovirus como método de producción de hemoaglutinina recombinante (rHA) para ser utilizada como vacuna para la prevención de la influenza equina. Para ello el ectodominio de la hemaglutinina (la subunidad HA1) del virus de la influenza equina se expresó en células de insecto infectadas con un baculovirus recombinante. La expresión fue demostrada por SDS-PAGE e inmunoblotting. El método empleado fue capaz de producir gran cantidad de rHA1. En este estudio se obtuvieron 20 μg/ml (200 μg de HA1 purificada de 2,5x107 células infectadas). La respuesta inmune fue evaluada mediante la inmunización de ratones BALB/c. Los resultados preliminares demostraron que la proteína recombinante expresada en baculovirus genera una fuerte respuesta inmune en ratones, por lo tanto podría ser utilizada como antígeno para la producción de una vacuna a subunidades y en pruebas diagnósticas.

La inmunidad celular y la vacunación contra la leishmaniasis cutánea / Tha cellular immunity and vaccination against cutaneous leishmaniesis

Revisión de la inmunoterapia de la leishmaniasis, los modelos en los animales de laboratorio, y los progresos recientes en la vacunación experimental. En los últimos años se han producido progresos importantes que han contribuido sustancialmente a clasificar el papel de las interleucinas y otros mediadores químicos en la respuesta inmunitaria. Todos estos hallazgos abren la puerta para la producción de vacunas mejores y más inmunogénicas que en un futuro cercano habrán de utilizarse ventajosam,ente en los humanos

Overview of flavivirus molecular biology and future vaccine development via recombinant DNA.

Studies in many laboratories over the last several years have elucidated the structures of several different flavivirus genomes. Conserved features include the production of at least 10 different virus encoded proteins from a single long open reading frame by a combination of host and virus-encoded proteases. The established gene order is 5'-C- prM(M)-E-NS1-NS2A-NS2B-NS3-NS4A-NS4B-NS 5-3' and these proteins exhibit varying degrees of homology in comparisons among flaviviruses. Conserved RNA sequences and structures have also been identified for the mosquito-borne flaviviruses but are absent in sequenced tick-bone viruses. Relevant to the development of efficacious flavivirus vaccines, studies aimed at defining the antigenic determinants necessary for eliciting protective immunity have focused primarily on the structural proteins, in particular the E protein, as well as the nonstructural secreted glycoprotein, NS1. Other work, which has led to the derivation of live-attenuated flavivirus strains, should eventually allow the genetic determinants of flavivirus attenuation and pathogenesis to be understood at the molecular level. The successful recovery infectious flaviviruses from cloned cDNA raises the possibility of manipulating these viral genomes as cDNA to construct or propagate candidate live-attenuated vaccine strains. Several applications of this technology are discussed.