RESUMEN
Introduction. The existing methods for Paracoccidioides spp. antigen production are problematic in terms of standardization, specificity, stability, repeatability, and reproducibility. Objective. To optimize the methodology for Paracoccidioides spp. antigen production and evaluate its applicability in paracoccidioidomycosis immunodiagnosis. Materials and methods. The antigens were obtained from Paracoccidioides lutzii isolates (01, 66, and 8334), Paracoccidioides brasiliensis sensu stricto (113), and Paracoccidioides restripiensis (B-339). These fungi were grown at 36 °C ± 1 °C, on modified Fava-Netto agar, according to Freitas et al. (2018). Paracoccidioides lutzii antigens were obtained after 5, 10, and 20 days of culture, whereas P. brasiliensis and P. restripiensis antigens were obtained after 10 days. Antigens were evaluated in natura, 10 and 20 times concentrated. Antigenic capacity was evaluated using a double immunodiffusion assay against serum samples from patients with paracoccidioidomycosis, histoplasmosis, and aspergillosis, and random blood donors. Results. Cross-reactivity between Paracoccidioides spp. antigens was observed when P. brasiliensis, P. restrepiensis antigens, and P. lutzii antigens were evaluated with the polyclonal antibodies against P. lutzii and P. brasiliensis, respectively. No cross-reactivity was obtained for polyclonal antibodies against Histoplasma capsulatum, Aspergillus fumigatus, and random blood donors. The proposed protocol allowed stable, repeatable, and reproducible genus-specific antigen production at a low cost and in a short cultivation time. Conclusion. The proposed protocol allowed us to obtain genus-specific antigens that can be developed and reproduced in all laboratories in Brazil and South America, where paracoccidioidomycosis is a neglected disease, contributing to an early diagnosis, especially in endemic regions, regardless of the species.
Introducción. Los métodos existentes para la producción de los antígenos de Paracoccidioides spp. son problemáticos en su estandarización, especificidad, estabilidad, repetibilidad y reproducibilidad. Objetivo. Optimizar la metodología para la producción de antígenos de Paracoccidioides spp. y evaluar su aplicabilidad en el inmunodiagnóstico de la paracoccidioidomicosis. Materiales y métodos. Los antígenos se obtuvieron de aislamientos de P. lutzii (01, 66 y 8334), P. brasiliensis sensu stricto (113) y P. restripiensis (B-339). Estos hongos se cultivaron a 36 °C ± 1 °C en agar Fava-Netto modificado, según Freitas et al. (2018). Los antígenos de P. lutzii se obtuvieron a los 5, 10 y 20 días de cultivo y los antígenos de P. brasiliensis y P. restripiensis se obtuvieron a los 10 días. Los antígenos se evaluaron in natura, concentrados 10 y 20 veces. La capacidad antigénica se evaluó mediante un ensayo de inmunodifusión doble con muestras de suero de pacientes con paracoccidioidomicosis, histoplasmosis, aspergilosis y donantes de sangre aleatorios. Resultados. Se observó reacción cruzada con Paracoccidioides spp. cuando se evaluaron los antígenos de P. brasiliensis, P. restrepiensis y P. lutzii frente a los anticuerpos policlonales contra P. lutzii y P. brasiliensis, respectivamente. No hubo reactividad cruzada con los anticuerpos policlonales contra Histoplasma capsulatum y Aspergillus fumigatus, ni contra los donantes de sangre aleatorios. El protocolo propuesto permitió la producción estable, repetible y reproducible de antígenos dirigidos de un género específico (Paracoccidiodes) en un tiempo corto de cultivo y a un menor costo. Conclusión. El protocolo propuesto permitió obtener antígenos específicos de un género, que pueden ser desarrollados y reproducidos en todos los laboratorios de Antígenos de Paracoccidioides spp.: protocolo rápido Brasil y Surámerica donde la paracoccidioidomicosis es una enfermedad endémica y desatendida. Estos antígenos pueden contribuir al diagnóstico precoz de la infección, independientemente de la especie.