Proliferação in vitro de fibrobastos sobre, superfícies de titânio quimicamente modificadas / In vitro proliferatian af fibroblasts an chemically madified titanium surfaces

O objetivo deste estudo foi comparar a proliferação in Vitro de fibroblastos sobre superfícies de titânio (Ti) quimicamente modificadas e sobre superfícies lisas. Placas de Ti foram atacadas com ácido fluorídrico e suas superfícies caracterizadas com microscópio eletrônico de varredura (Jeol. modelo JSM-5800)e rugosímetro (Mitutoyo, modelo SJ20 IP- rugosidade média (Ra): 0.84 : ±0,00um).Fibroblastos (VERO)foram cultivados em triplicata (40.000 células/poço) sobre as superfícies experimentais de Ti(rugosas) e controles (lisas, Ra: 0.13 ±0,00μm) por 1, 2, 7 e 14 dias. A proliferação celular foi avaliada pelo método do MTT Os resultados da absorbância (média : ±DP)sobre as superfícies lisas foram 0.08 : ±0,02; O,11: ±0,00;0.78: ±0.05 e 1.46, ±0.02, e sobre as superfícies rugosas foram0.05 : ±0.01; 0.06 : ±0.01; 0.6 J : ±0.04 e 1.34 ±0,13), respectivamente nos quatro períodos estudados. Os resultados no ensaio do MTT foram estatisticamente diferentes nos períodos de dois (p= 0.011 e sete dias (p= 0.0141 de cultura, porém não foram encontradas diferenças após 14 dias (p= 0,197). Em conclusão, os fibroblastos inicialmente proliferaram mais lentamente nas superfícies de Ti tratadas quimicamente do que nas superfícies lisas, porém esta diferença não foi observada após 14 dias de cultura.

Anionic sites, fucose residues and Class I human leukocyte antigen fate during interaction of Toxoplasma gondii with endothelial cells

Toxoplasma gondii invades and proliferates in human umbilical vein endothelial cells where it resides in a parasitophorous vacuole. In order to analyze which components of the endothelial cell plasma membrane are internalized and become part of the parasitophorous vacuole membrane, the culture of endothelial cells was labeled with cationized ferritin or UEA I lectin or anti Class I human leukocytte antigen (HLA) before or after infection with T. gondii. The results showed no cationized ferritin and UEA I lectin in any parasitophorous vacuole membrane, however, the Class I HLA molecule labeling was observed in some endocytic vacuoles containing parasite until 1 h of interaction with T. gondii. After 24 h parasite-host cell interaction, the labeling was absent on the vacuolar membrane, but presents only in small vesicles near parasitophorous vacuole. These results suggest the anionic site and fucose residues are excluded at the time of parasitophorous vacuole formation while Class I HLA molecules are present only on a minority of Toxoplasma-containig vacuoles