RESUMEN
We have identified a novel DNA sequence of 500 bp (β500-DNA) on the Leishmania (Viannia) subgenus, located in the intergenic region of one of the loci of the β-tubulin gene family. The sequence analysis showed that this sequence has no homology to any other sequence described so far, including the β-tubulin gene. We improved a specific β500-PCR assay, which generated a PCR product of 375 bp for total genomic DNA from Leishmania strains belonging to the L. (Viannia) subgenus. In contrast, no amplification was found when using genomic DNA from species of L. (Leishmania) subgenus or other organisms. Under our PCR conditions, the lower detection limit was 1 fg when a purified DNA clone (pLgβ4), which contains one copy of the β500-DNA sequence, was used. The β500-DNA PCR assay confirmed the preliminary diagnosis of cutaneous leishmaniasis in clinical samples in which the Montenegro skin test was positive and parasite cultures were negative. The analytical specificity and the sensitivity of the PCR assay provide a tool for epidemiological studies of the disease.
En este trabajo identificamos una nueva secuencia de DNA de 500 pb (β500-DNA) en Leishmania del subgénero Leishmania (Viannia), localizada en la región intergénica de uno de los loci de la familia de los genes de la β tubulina. El análisis de secuencia mostró que β500 no tiene homología con ninguna otra secuencia previamente descrita, incluido el gen de la β tubulina. Nosotros implementamos un ensayo de PCR específico para β500, β500-PCR, que genera un producto de PCR de 375 pb a partir del DNA genómico de cepas de Leishmania pertenecientes al subgénero L. (Viannia). No hubo amplificación alguna cuando se utilizó el DNA genómico de especies del subgénero L. (Leishmania) o el de otros organismos. En las condiciones establecidas, utilizando DNA purificado del clon pLgβ4, que contiene una copia de la secuencia de DNA de β500, el límite de detección más bajo fue de 1 fentogramo. El ensayo β500-PCR confirmó el diagnóstico preliminar de leishmaniasis cutánea en muestras clínicas de pacientes positivas a la prueba de Montenegro y negativas en el cultivo de parásitos. La especificidad y sensibilidad analítica del ensayo de PCR proporciona una herramienta para estudios epidemiológicos de la enfermedad.
RESUMEN
La amplificación por reacción de la polimersa en cadena (RPC) de un fragmento del gen hsp65, seguido del análisis del polimorfismo de la longitud de los fragmentos de restricción (PLFR) por las enzimas BstEll y Haelll, ha demostrado ser muy útil en la identificación de micobacterias no tuberculosas (MNT). En el presente trabajo se les realizó una batería de pruebas bioquímicas así como la RPC-PLFR a un total de 13 cepas de referencia y 46 cepas recibidas en el laboratorio. Los resultados de las pruebas bioquímicas estuvieron disponibles entre 4 a 6 semanas, a diferencia de la RPC-PLFR que requirieron de sólo 48 horas. En ambos métodos, las especies detectadas con mayor frecuencia fueron Mycobacetrium intracellulare, M. kansasii y M. fortuitum. La RPC-PLFR es un método rápido, sencillo y eficaz. Su aplicación en los Laboratorios de Referencia pudiera ser de gran utilidad para el diagnóstico de MNT.
The amplification of a fragment from hsp65 gene by polymerase chain reaction (PCR) followed by restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis with BstEll and Haelll restriction enzymes has demonstrated to be very useful for identification of Non-Tuberculous Mycobacteria (NTM). The biochemical tests as well as the PCR-RFLP were carried out in 13 reference strains and 46 strains received in the laboratory. The results by biochemical tests were available in 4-6 weeks whereas the PCR-RFLP only required 48 hours. In both methods, Mycobacterium intracellulare, M. kansasii and M. fortuitum were the most frequently detected species. The PCR-RFLP method is fast, cheap and simple. Its application in Reference Laboratories could be very useful for diagnosis of NTM.