Immunoblotting analyses using two-dimensional gel electrophoresis of Trypanosoma cruzi excreted-secreted antigens

Formas tripomastigotas de Trypanosoma cruzi excretam/secretam uma complexa mistura de moléculas antigênicas. Essa mistura é chamada trypomastigote excreted-secreted antigens e contém uma banda de massa molecular em torno de 150-160kDa que possui excelente performance para diagnóstico de doença de Chagas em immunoblotting. No presente estudo foi caracterizado parcialmente, por gel bidimensional, a proteína de 150-160kDa pela análise da reatividade de anticorpos de pacientes chagásicos nas diversas fases da doença. Proteínas do trypomastigote excreted-secreted antigens foram separadas por eletroforese de alta resolução em duas dimensões (2D) e submetidas a immunoblotting com soros de pacientes chagásicos e não chagásicos. A proteína de 150-160kDa foi identificada em quatro isoformas com pontos isoelétricos variando entre 6,2 a 6,7. As quatro isoformas foram reconhecidas por anticorpos IgM na fase aguda e por anticorpos IgG na fase crônica da doença de Chagas. A isoforma de 150-160kDa, com ponto isoelétrico de aproximadamente 6,4 tornou-se imunodominante dentre as demais com a progressão da doença. Não foi detectada reatividade cruzada com os soros de pacientes não chagásicos ou pacientes infectados com Leishmania sp. Os dados obtidos nesse trabalho, reforçam a importância da utilização do trypomastigote excreted-secreted antigens para o diagnóstico sorológico da doença de Chagas.

Strongyloides ratti antigenic components recognized by IgE antibodies in immunoblotting as an additional tool for improving the immunodiagnosis in human strongyloidiasis

IgE antibody response in human strongyloidiasis was evaluated by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and immunoblotting (IB) using Strongyloides ratti saline extract as heterologous antigen. A total of 50 serum samples of patients who were shedding S. stercoralis larvae in feces (group I, copropositive), 38 of patients with other intestinal parasites (group II), and 38 of subjects with negative results in three parasitologic assays (group III, copronegative) were analyzed. Levels of IgE anti-Strongyloides expressed in ELISA Index (EI) were significantly higher in patients of group I (1.32) than in group II (0.51) and group III (0.81), with positivity rates of 54 percent, 0 percent, and 10.5 percent, respectively. Fifteen S. ratti antigenic components were recognized in IB-IgE by sera of group I, with frequency ranging from 8 percent to 46 percent. In group II, only two antigenic bands (101, 81 kDa) were detected in a frequency of 10 percent and no reactivity was found in group III. Sera with EI values > 1.5 recognized five from 13 specific antigenic bands (70, 63, 61, 44, 7 kDa). It can be concluded that these five antigenic components recognized by IB-IgE using S. ratti antigen might be employed as an additional tool for improving the immunodiagnosis in human strongyloidiasis.