Histological description of oogenesis in chiton virgulatus (Mollusca: Polyplacophora) / Descripción histológica de la ovogénesis de chiton virgulatus (Mollusca: Polyplacophora)

This paper describes the oogenesis of Chiton virgulatus, based on histological observations under transmission and scanning electron microscopy. Three oocyte types were identified: i) previtellogenic oocytes with a mean diameter of 50±20.5 µm, surrounded by elongated follicular cells of approximately 5 µm, ii) immature vitellogenic oocytes with a mean diameter of 113±15.3 µm and small cytoplasmic projections denoting the onset of the oocyte hull development; adjacent to each projection are pores approximately 0.7 µm in diameter, and iii) mature vitellogenic oocytes with a mean diameter of 146±24.8 µm; the oocyte cytoplasmic projections grow and its apical zone becomes trident-shaped; follicular cells adopt a bulbous shape due to the growth of the elongation and can reach up to 20 µm in length. The morphology and ultrastructure of the projections of the mature vitellogenic oocyte, as well as the size of pores at their base, are specific to C. virgulatus; therefore, these features could be used in taxonomic or fertilization studies.

En el presente trabajo se describe la ovogénesis de Chiton virgulatus, utilizando histología y las técnicas de microscopía electrónica de barrido y de transmisión. Se identificaron tres tipos de ovocitos: i) ovocitos previtelogénicos con un diámetro promedio de 50±20,5 µm, rodeados por células foliculares de forma alargada y un tamaño de aproximadamente 5 µm, ii) ovocitos vitelogénicos inmaduros con un diámetro promedio de 113±15,3 µm, este tipo de ovocitos presentan pequeñas proyecciones citoplasmáticas, que indican el inicio del desarrollo del casco del ovocito. Adyacentes a cada prolongación se presentan poros con un diámetro aproximado de 0,7 µm y iii) ovocitos vitelogénicos maduros con un diámetro promedio de 146±24,8 µm, las proyecciones citoplasmáticas del casco del ovocito crecen y en su parte apical adquieren la forma de un tridente, las células foliculares, dado el crecimiento de la prolongación toman el aspecto bulboso y llegan a medir hasta 20 µm de longitud. La morfología y la ultraestructura de las proyecciones del casco del ovocito vitelogénico maduro, así como el tamaño del poro en la base de las proyecciones son particulares para C. virgulatus, dichas características podrían ser utilizadas en trabajos de taxonomía y fertilización.

Histología del ciclo reproductor de hembras del pejelagarto Atractosteus tropicus (Lepisosteiformes: Lepisosteidae) enTabasco, México / Histology of reproductive cycle of tropical gar Atractosteus tropicus females (Lepisosteiformes: Lepisosteidae) in Tabasco, Mexico.

En el sureste de México A. tropicus es una especie de gran importancia ecológica, económica, cultural y para acuicultura, sin embargo, sus poblaciones silvestres han disminuido a causa de diversas actividades antropogénicas, por lo que se caracterizó el ciclo reproductor de A. tropicus, a partir de los cambios en los elementos germinales y somáticos durante la ovogénesis y la estructura de toda la gónada, información valiosa para el mejor manejo y aprovechamiento de la especie. Mensualmente se capturaron con redes de arrastres, seis hembras sexualmente maduras (N=72), durante un ciclo anual (octubre 2003-septiembre 2004), en poblaciones silvestres de la laguna de Pomposu del municipio de Jalpa de Méndez; Tabasco, México. Las hembras fueron sacrificadas por decapitación y los ovarios se procesaron por métodos histológicos convencionales, se determinó el diámetro entre 10-20 ovocitos en los diferentes estadios de desarrollo al azar. Se determinó mensualmente el índice gonadosomático (IGS), volumen gonadal (gV) y el diámetro del folículo (fD). Además, se identificaron ocho estadios de desarrollo de la ovogénesis: I: cromatina nucléolo, II: perinucléolo temprano, III: perinucléolo avanzado, IV: alvéolos corticales, V: vitelogénesis temprana, VI: vitelogénesis media, VII: vitelogénesis avanzada, VIII: maduración final. El ciclo reproductor la constituye cuatro clases: I.-Proliferativa, II.-Maduración inicial, III.-Maduración tardía, IV.-Regresión-proliferación. El análisis de la información obtenida de los valores encontrados del IGS, gV, fD, estadios de la ovogénesis y clases reproductivas, indican que en diciembre se reinicia el crecimiento de los folículos (previtelogenesis), de mar-zo-julio se presenta la captación del vitelo (vitelogenesis) y en agosto-noviembre se presenta la máxima actividad reproductora, al contrastar este patrón con los factores ambientales (temperatura, precipitación) se sugiere que estos pueden funcionar como un gatillo ambiental, en el desarrollo de la ovogénesis y el desove.

In Southeast Mexico, A. tropicus is a species with great ecological, economic, cultural and aquaculture value, however wild populations have diminished due to diverse anthropological causes. The objective of this study was to characterize the reproductive cycle of A. tropicus, with a description of complete gonad structure and the changes in germinal and somatic elements during oogenesis, for better management and use of this species. Six sexually mature females (N=72) were captured monthly with drag nets during one year cycle (October 2003-October 2004) in wild populations of Pomposu lagoon, municipality of Jalpa de Mendez, Tabasco, Mexico. Females were sacrificed by decapitation and the ovaries were processed by standard histological methods; the diameter of 10-20 oocytes taken at random was determined in different stages of development. Gonadosmatic index (GSI), gonadal volume (gV) and follicule diameter (fD) were determined monthly. Among results we could determine eight oogenesis developmental stages: I: chromatin nucleolus stage, II: early perinucleolus stage, III: mid perinucleolus stage, IV: advanced perinucleolus stage, V: early vitellogenesis stage, VI: mid vitellogenesis stage, VII) advanced vitellogenesis stage and VIII: final maturation stage. The reproductive cycle could be divided in four phases: I: proliferative phase, II: initial maturation phase, III: late maturation phase, IV: regressing phase. Analysis of the data obtained from the IGS, gV and fD values, oogenesis stages and reproductive phases, indicate that in December previtellogenesis phase restarts, from March through July yolk deposition (vitellogenesis) occurs, and from August to November the maximum reproductive activity takes place. Contrasting this pattern with local environmental factors such as temperature and precipitation, we suggested that these may serve as an environmental activator in the development of oogenesis and spawning of this species. Rev. Biol. Trop. 60 (4): 1857-1871. Epub 2012 December 01.