Citotoxidad de la beta lapachona: una o-naftoquinona con posibles usos terapeuticos / Cytotoxicity of beta-lapachone, an naphthoquinone with possible therapeutic use

La Beta-lapachona (Beta-lap) es una o-naftoquinona extraída de la madera del lapacho. Las observaciones iniciales mostraron su acción inhibidora del crecimiento del sarcoma de Yoshida y del carcinosarcoma de Walker 256. La Beta-lap genera productos reactivos del oxígeno (ROS: anión superóxido, radical hidroxilo y peróxido de hidrógeno) a los que inicialmente se atribuyó su citotoxicidad. Beta-Lap resultó un potente inhibidor de la síntesis de ADN en T. cruzi, de la topoisomerasas I y II y de la poli(ADP-ribosa) polimerasa (PARP) de diferentes orígenes, enzimas responsables de la conservación del ADN. Se investigó la citotoxicidad de Beta-lap en células de cáncer epidermoide de laringe, melanoma, cáncer de ovario, de mama, de próstata, de pulmón, adenocarcinoma de colon y leucemia, aportando un mejor conocimiento de los mecanismos moleculares involucrados en la acción de Beta-lap y su relación con los procesos de apoptosis y de necrosis. Se comprobó la activación de la calpaina, proteasa cuya actividad depende de tioles, seguida por la activación de quinasas (c-JUN NH2 -quinasa terminal), caspasas y nucleasas, enzimas que degradan al ADN y a las proteínas celulares. Una reacción importante para la actividad de la Beta-lap es su reducción, especialmente por la diaforasa y la NAD(P)H-quinona reductasa, que inician la producción de ROS. La acción de Beta-lap sobre células tumorales resultaría de la inhibición directa de enzimas como las topoisomerasas, PARP y el factor TNF, sumada a la acción de radicales libres. Los efectos citostáticos de ß-lap han abierto interesantes perspectivas para la quimioterapia del cáncer.

Isolation and purification of plasminogen activator from Yoshida ascites Sarcoma of rats.

The plasminogen activator was purified to the extent of 150-fold from 20,000 x g supernatant of Yoshida ascites Sarcoma by ammonium sulphate precipitation at 33% saturation followed by affinity chromatography on p-aminobenzamidine-Sepharose 4B. The specific activity of the purified activator was 10,260 IU/mg expressed in terms of International units of urokinase, the known activator of plasminogen. The activator was homogeneous by polyacrylamide slab gel electrophoresis with an apparent molecular weight 75 kDa by gel filtration on Sephadex G-100. Analysis by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis under reducing conditions, revealed the presence of two subunits of about 48 and 29 kDa. The activator displayed binding preference to fibrin and was immunologically distinguishable from urokinase, indicating that it could be of non-urokinase origin. The preparation further revealed similarity to standard tissue plasminogen activator with respect to fibrin binding and immunological cross reactivity.