RESUMO
The Infectious Bursal Disease Virus (IBDV) causes immunosuppression in young chickens. Advances in molecular virology and vaccines for IBDV have been achieved by viral reverse genetics (VRG). VRG for IBDV has undergone changes over time, however all strategies used to generate particles of IBDV involves multiple rounds of amplification and need of in vitro ligation and restriction sites. The aim of this research was to build the world's first VRG for IBDV by yeast-based homologous recombination; a more efficient, robust and simple process than cloning by in vitro ligation. The wild type IBDV (Wt-IBDV-Br) was isolated in Brazil and had its genome cloned in pJG-CMV-HDR vector by yeast-based homologous recombination. The clones were transfected into chicken embryo fibroblasts and the recovered virus (IC-IBDV-Br) showed genetic stability and similar phenotype to Wt-IBDV-Br, which were observed by nucleotide sequence, focus size/morphology and replication kinetics, respectively. Thus, IBDV reverse genetics by yeast-based homologous recombination provides tools to IBDV understanding and vaccines/viral vectors development.
Assuntos
Animais , Embrião de Galinha , Recombinação Homóloga , Vírus da Doença Infecciosa da Bursa/genética , Genética Reversa/métodos , Brasil , Células Cultivadas , Fibroblastos/virologia , Vetores Genéticos , Instabilidade Genômica , Vírus da Doença Infecciosa da Bursa/isolamento & purificação , Vírus da Doença Infecciosa da Bursa/fisiologia , Saccharomyces cerevisiae/genética , Transfecção , Cultura de Vírus , Replicação ViralRESUMO
A Doença de Gumboro (DG) é uma doença imunossupressora comum em aves jovens infectadas pelo Vírus da Doença de Gumboro (Infectious Bursal Disease Vírus, IBDV), sendo responsável por perdas econômicas no setor avícola. O vírus influenza apresenta-se com um alto nível de mutação, o que resulta no surgimento de vírus imunologicamente distintos capazes de causar pandemias ou epidemias. Entende-se por sistema de genética reversa viral (SGRV) a geração/recuperação de vírus por meio da transfecção celular do cDNA viral clonado ou seu RNA viral transcrito in vitro. SGRV pode ser usado na elucidação dos mecanismos de replicação do influenza e IBDV, e aplicações biotecnológicas como desenvolvimento de vacinas. Diante desse levantado, objetivou-se a construção de dois SGRVs por recombinação homóloga em levedura (RHL): um para IBDV e outro para influenza aviária (IA). Para o SGRV do IBDV, IBDV foi isolado no Brasil, teve seu genoma amplificado e clonado por RHL no vetor pJG-CMV-HDR. Os clones foram transfectados em fibroblasto de embrião de galinha (FEG) e o vírus gerado (IC-IBDVBr) mostrou estabilidade gênica e fenótipo similar ao vírus parental. A geração e crescimento do IC-IBDVBr não foram possíveis em células Vero. Para o SGRV do IA, IA foi isolado no Brasil, seu genoma foi amplificado e clonado em pDrive/pGEM-T Easy e depois subclonado por RHL no vetor pJGCh2008. Os clones em pJG-Ch2008 responsáveis pela codificação das proteínas do complexo polimerase viral (CPV) foram transfectados simultaneamente em células Human Embryonic Kidney 293T com plasmídeos contendo o gene repórter red fluorescent protein ou Gaussia luciferase, ambos flanqueados pela untransleated region do influenza. A funcionalidade do CPV do IA foi verificada pela expressão de RFP e GLuc. A recuperação do IA em FEG pelos clones em pJG-Ch2008 não foi possível. A funcionalidade do CPV mais a integridade dos clones indicam que a recuperação do IA não foi possível provavelmente devido à eficiência da transfecção celular. A construção do SGRV para IBDV, o primeiro do mundo feito por RHL e o primeiro desenvolvido no Brasil, junto com os passos iniciais para a construção do primeiro SGRV para influenza feito por RHL e a consequente construção do CPV por essa tecnologia, disponibilizam ao país ferramentas capazes de contribuir no esclarecimento do ciclo replicativo de ambos os vírus, além de criar bases para o futuro desenvolvimento de vacinas e vetores virais.
Assuntos
Animais , Vírus da Doença Infecciosa da Bursa/genética , Vírus da Doença Infecciosa da Bursa/isolamento & purificação , Vírus da Influenza A/genética , Vírus da Influenza A/isolamento & purificação , Clonagem Molecular , Influenza Aviária/virologia , Leveduras/genética , Recombinação Genética , Reação em Cadeia da Polimerase Via Transcriptase ReversaRESUMO
Sequencing and phylogenetic analysis based on the nucleotide sequence of the gene encoding VP2 protein was carried out in order to characterize the agent of two outbreaks of infectious bursal disease in layer flocks in the state of Minas Gerais in 2004. The results indicate the outbreaks could be related to the vaccinal virus.
O sequenciamento e a análise filogenética a partir da seqüência nucleotídica do gene que codifica a proteína VP2 foram realizados com o intuito de caracterizar os agentes causadores de dois surtos da doença infecciosa bursal em lotes de poedeiras do estado Minas Gerais, em 2004. Os resultados indicam que os surtos analisados podem estar relacionados com o vírus de origem vacinal.
Assuntos
Animais , Sequência de Bases , Surtos de Doenças , Técnicas In Vitro , Filogenia , Proteínas/genética , Reação em Cadeia da Polimerase Via Transcriptase Reversa , Vírus da Doença Infecciosa da Bursa/genética , Vírus da Doença Infecciosa da Bursa/isolamento & purificação , Aves , Análise Citogenética , MétodosRESUMO
In order to evaluate the use of a Western blot methodology for the diagnosis of infectious bursal disease virus (IBDV) infection, chickens were experimentally infected with IBDV strains and tested for the presence of viral antigens and antibodies by a blocking Western blot test (bWB). The viral proteins obtained from the bursa of Fabricius (BF) were transferred to a nitrocellulose membrane after sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE), and the chicken sera obtained by heart puncture were used for the detection of these proteins. In order to eliminate nonspecific reactions, we used a rabbit anti-chicken serum (blocking tool). By the use of the bWB test, two distinct viral proteins of 43-kDa (VP2) and 32-kDa (VP3) were detected. We suggest the use of this methodology for the detection of IBDV infection in animals suspected of having IBDV reinfection and a chronic subclinical form of the disease. With the use of the rabbit anti-chicken sera for blocking, this method is practical, sensitive and less time consuming.