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El estadio amastigota precede la evolución del epimastigota durante la epimastigogénesis in vitro de Trypanosoma cruzi / The amastigote stadium precedes epimastigote evolution during in vitro Trypasnosoma cruzi epimastigogenesis
Graterol, Diana; Arteaga, Rosa Yanet; Navarro, María Consuelo; Domínguez, María Isabel; De Lima, Ana Rita; Contreras, Víctor Tulio.
  • Graterol, Diana; Universidad de Carabobo. Facultad de Ciencias de la Salud. Instituto de Biología Molecular de Parásitos (InBioMolP). Laboratorio de Protozoología. VE
  • Arteaga, Rosa Yanet; Universidad de Carabobo. Facultad de Ciencias de la Salud. Instituto de Biología Molecular de Parásitos (InBioMolP). Laboratorio de Protozoología. VE
  • Navarro, María Consuelo; Universidad de Carabobo. Facultad de Ciencias de la Salud. Instituto de Biología Molecular de Parásitos (InBioMolP). Laboratorio de Protozoología. VE
  • Domínguez, María Isabel; Universidad de Carabobo. Facultad de Ciencias de la Salud. Instituto de Biología Molecular de Parásitos (InBioMolP). Laboratorio de Protozoología. VE
  • De Lima, Ana Rita; Universidad de Carabobo. Facultad de Ciencias de la Salud. Instituto de Biología Molecular de Parásitos (InBioMolP). Laboratorio de Protozoología. VE
  • Contreras, Víctor Tulio; Universidad de Carabobo. Facultad de Ciencias de la Salud. Instituto de Biología Molecular de Parásitos (InBioMolP). Laboratorio de Protozoología. VE
Rev. Soc. Venez. Microbiol ; 33(1): 72-79, jun. 2013. ilus, tab
Article in Spanish | LILACS | ID: lil-703763
RESUMEN
La transformación de tripomastigotas sanguíneos de Trypanosoma cruzi en epimastigotas, ocurre naturalmente en el intestino del insecto y se identifica como epimastigogénesis. Aquí reportamos que durante la epimastigogénesis in vitro, los tripomastigotas se transforman en formas redondeadas, biológica y antigénicamente equivalentes al estadio amastigota; con un tiempo de persistencia dependiente de la altura del medio de cultivo. Formas tripomastigotas procedentes de cultivo de tejidos infectados se incubaron en envases con diferentes alturas de medio LITB (3 y 83 mm), y se compararon las cinéticas de transformación hacia epimastigotas. Para la obtención de antígenos se colectaron masas de parásitos a diferentes tiempos de diferenciación. Los cambios morfológicos, incremento del inóculo y resistencia a complemento, se estudiaron por microscopía de contraste de fases y extendidos coloreados con Giemsa. Los cambios antigénicos se analizaron mediante Western Blot usando anticuerpo IgY anti-amastigotas. Los resultados mostraron que las formas redondeadas resisten la lisis por complemento, expresan antígenos amastigota-específicos y la velocidad de transformación hacia epimastigotas depende de la altura del medio sobrenadante en el cultivo. Las evidencias sugieren que además de caída de la temperatura, una baja tensión de oxígeno disuelto y una alta densidad de parásitos por área, aceleran el proceso de diferenciación.
ABSTRACT
Transformation of blood Trypanosoma cruzi tripomastigotes into epimastigotes occurs naturally at the insect gut and is identified as epimastigogenesis. Here we report that during in vitro epimastigogenesis, tripomastigotes transform into rounded forms, biologically and antigenically equivalent to the amastigote stadium, with a persistance time which depends on the height of the culture medium. Tripomastigote forms from cultures of infected tissues were incubated in flasks with different LITB medium heights (3 and 83 mm), and kinetics of transformation to epimastigotes were compared. Masses of parasites at different differentiation times were collected for antigen production. Morphological changes, inoculum increase and resistance to complement were studied by phase contrast microscopy and Giemsa stained smears. Antigenic changes were analyzed through Western Blot using an IgY anti-amastigote antibody. Results showed that rounded forms resist lysis by complement, express amastigote-specific antigens, and that the speed of transformation to epimastigotes depends on the height of the supernatant medium in the culture. Evidences suggest that apart from a temperature fall, a low dissolved oxygen tension and a high parasite per area density accelerate the differentiation process.

Full text: Available Index: LILACS (Americas) Language: Spanish Journal: Rev. Soc. Venez. Microbiol Year: 2013 Type: Article Affiliation country: Venezuela Institution/Affiliation country: Universidad de Carabobo/VE

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