Housekeeping genes for RT-qPCR in ovine preimplantation embryos.

Housekeeping genes (HKG) are paramount for accurate gene expression analysis during preimplantation development. Markedly, quantitative reverse transcription polymerase chain reaction (RT-qPCR) in ovine embryos currently lacks HKGs. Therefore, we tested 11 HKGs for RT-qPCR normalization during ovine parthenogenetic preimplantation development. Seven HKGs reached the qPCR efficiency threshold (97.20-105.96%), with correlation coefficients ranging from -0.922 to -0.998 and slopes from -3.22 to -3.59. GeNorm ranked glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) and TATA-binding protein (TBP) as the best HKG pair, while H3 histone, family 3A (H3F3A) was the third HKG. Relative gene expression was measured for zinc finger protein X-linked (ZFX) and developmental pluripotency-associated 3 (DPPA3) transcripts during ovine parthenogenetic preimplantation development. ZFX did not show any transcript abundance fluctuation among oocytes, cleavage-stage embryos, and morulae. DPPA3 transcript abundance was also similar among all developmental stages, therefore suggesting that it may not display a maternal gene expression profile. In silico analysis of ovine DPPA3 mRNA and protein showed high conservation to bovine orthologues. However, DPPA3 orthologues differed in regulatory motifs. In conclusion, GAPDH, TBP and H3F3A are stable HKGs in ovine parthenogenetic embryos and allow accurate RT-qPCR-based gene expression analysis.

Sexagem fetal em ovelhas Santa Inês por ultra-sonografia / Fetal sexing in Santa Inês ewes by ultrasonography

O presente estudo teve a finalidade de identificar o sexo e de determinar o dia da migração do tubérculo genital (TG) de fetos ovinos através da ultra-sonografia em tempo real. O sexo foi identificado no Experimento I (EI) levando-se em consideração a localização do TG e no Experimento II (EII), a presença do pênis, prepúcio e bolsa escrotal no feto macho e das tetas, vulva e clitóris no feto fêmea. No EI, as fêmeas (n=17) foram monitoradas em intervalos de 12 horas, do 35o ao 46o dia de gestação, por via transretal com transdutor linear (6,0 e 8,0 MHz). No EII, as fêmeas (n=30) com gestação de 55 a 75 dias foram examinadas apenas uma vez, utilizando-se o mesmo transdutor e via de exame do EI. Das 17 fêmeas do EI, 11 (64,6 por cento) tiveram seus fetos corretamente sexados, independente da gestação ter sido simples (7/11), dupla (3/11) ou tríplice (1/11). Nas 6 (35,4 por cento) gestações restantes, 3 (17,7 por cento) foram duplas, sendo impossível sexar um feto de cada gestação. Nas outras 3 (17,7 por cento) gestações, os fetos foram corretamente sexados, apesar dos nascimentos não coincidirem com a quantificação. Num feto macho de uma gestação simples, a migração ocorreu no 37º dia e até o 46º, todos os fetos das outras gestações estavam corretamente sexados. Das 30 fêmeas do EII, 16 (53,4 por cento) apresentaram gestações simples e a acurácia da sexagem foi de 100 por cento. Nas 14 (46,6 por cento) restantes, as gestações foram duplas, sendo impossível, em quatro casos, determinar o sexo de, pelo menos, um dos gêmeos. De todos os fetos nascidos, a acurácia geral da sexagem foi de 88,0 por cento (EI) e 90,9 por cento (EII), não sendo observada diferença (P>0,05) entre ambos os experimentos. Os resultados permitem concluir que a ultra-sonografia em tempo real é um método eficiente para diagnosticar o sexo fetal pela visualização do TG, assim como pela identificação do pênis, prepúcio e bolsa escrotal no feto macho e das tetas, vulva e clitóris no feto fêmea, desde que os exames sejam realizados a partir do 50o dia de gestação.