Involvement of mast cells, CD68+ and VEGF+ expressions in response to Himatanthus drasticus commercial latex in mice wound healing model / Envolvimento de mastócitos, expressão de CD68+ e VEGF+ em resposta ao látex comercial de Himatanthus drasticus em modelo de cicatrização em camundongos

This study aimed to evaluate Himatanthus drasticus latex in a mice wound healing experimental model. Animals were divided into four groups (n=7) according to the treatments: GI - saline 0.9% (control), GII - mineral oil (vehicle), GIII - H. drasticus commercial latex (HdCL) and GIV - H. drasticus mixed isolated fraction (MIF, 1 mg/mL). The treatments were applied topically once daily, 50 µL for 14 consecutive days. Macroscopic lesions were evaluated, considering parameters such as swelling, redness, granulation tissue and reepithelialization. VEGF+, CD68+ expressions and mast cells (Toluidin blue stain) were evaluated. HdCL induced higher contraction and exuberant granulation tissue (P > 0.05). HdCL showed a mild inflammatory process while MIF induced intense infiltrate inflammatory predominantly by lymphocytes, vascular congestion, bleeding and did not presented full reepithelialization. Reorganization of collagen fibers (red picrosirius stain) was observed. CD68+ expression and mast cells were presented as moderate, intense and mild in GI, GIII and GIV, respectively. Neovascularization occurred in all groups, while VEGF+ expression was intense in MIF in relation to HdCL. We concluded that HdCL presents wound healing potential, through modulation of mast cells, CD68+ and VEGF+ expressions that can be associated to triterpenes presence according MIF isolated from HdCL.(AU)

Objetivou-se avaliar o látex de Himatanthus drasticus em feridas induzidas experimentalmente em camundongos. Os animais foram divididos em quatro grupos (n=7): GI - salina 0,9% (controle), GII - óleo mineral (veículo), GIII - látex comercial de H. drasticus (HdCL) e GIV - fração isolada mista de H. drasticus (MIF, 1mg/mL). Os tratamentos foram aplicados topicamente uma vez ao dia (50µL), durante 14 dias consecutivos. Lesões macroscópicas, as expressões de VEGF+, CD68+ e a participação dos mastócitos (coloração azul de toluidina) foram avaliadas. HdCL induziu maior contração e tecido de granulação exuberante (P >0,05). HdCL induziu leve processo inflamatório enquanto MIF promoveu intenso infiltrado inflamatório predominantemente linfocítico, congestão vascular, hemorragia e reepitelização parcial. Observou-se reorganização das fibras colágenas (coloração picrosírius). A expressão de CD68+ e os mastócitos apresentaram-se moderados, intensos e leves em GI, GIII e GIV, respectivamente. A neovascularização foi observada em todos os grupos, enquanto a expressão de VEGF+ foi mais intensa em MIF em relação a HdCL. Conclui-se que HdCL apresenta potencial de cicatrização por meio da modulação dos mastócitos e das expressões de CD68+ e VEGF+, o que pode estar associado à presença de triterpenos de acordo com MIF isolada de HdCL.(AU)

Micropropagação e conservação de Macrosyphonia velame (St. Hil.) Muell. Arg. em banco de germoplasma in vitro / Micropropagation and conservation of Macrosyphonia velame (St. Hil.) Muell. Arg. in vitro germoplasm bank

A Macrosyphonia velame é uma planta medicinal do Cerrado, pertencente à família Apocynaceae, e conhecida popularmente como velame branco. Extratos de raízes de velame são utilizados pela população como depurativo e anti-sifilítico. Este trabalho teve como objetivo desenvolver o protocolo de micropropagação de M. velame, com vistas à conservação da espécie em Banco do Germoplasma in vitro. Sementes foram coletadas nos municípios de Sacramento, Tapira e Araxá, MG, e utilizadas como fonte de explantes. Segmentos nodais de plântulas axênicas foram transferidos para meio MS/2 suplementado com BAP, Cinetina, 2ip e TDZ em diferentes concentrações (0,25; 5,0 e 1,0mg L-1). Para o enraizamento, brotações com 2cm de altura foram transferidas para meios MS/2 suplementado com 1,0; 5,0; e 10,0mg L-1 de IBA ou ANA e cultivadas por 5, 10 e 30 dias, sendo em seguida subcultivadas em MS/2 por mais trinta dias e só então avaliadas quanto à formação de raízes. Na aclimatização e enraizamento ex vitro, foram utilizados substratos Plantmax®, areia e solo individualmente ou em combinações (1:1) de areia/Plantmax®; areia/solo; Plantmax®/solo. Para o estabelecimento do Banco de Germoplasma, brotações com 3,5cm foram transferidas para meio MS/2 suplementado com 2 por cento de sacarose + 4 por cento de manitol ou sorbitol; 2 por cento de sacarose + 4 por cento de manitol ou sorbitol + 2mg L-1 de pantotenato de cálcio; 2 por cento de sacarose + 4 por cento de manitol ou sorbitol + 2mg L-1 de espermidina. A porcentagem de germinação in vitro foi baixa, 33 por cento, 4 por cento e 2 por cento das sementes coletadas em Araxá, Tapira e Sacramento, respectivamente. O meio MS/2 sem adição de citocinina promoveu a proliferação de brotos (4,0 por gema), elongação (5,2cm), número de gemas (8,6) e reduziu vitrificação (4 por cento). Em relação aos substratos testados, as plântulas se desenvolveram melhor no Plantmax®, sendo que 40 por cento das plântulas sobreviveram e a maioria apresentou formação de raízes. Plântulas cultivadas por três meses em meio de cultura MS/2 + 2 por cento de sacarose + 4 por cento de manitol + 2mg L-1 de pantotenato de cálcio, sob condições de Banco de Germoplasma, apresentaram 40 por cento de sobrevivência.

Root extracts of Macrosyphonia velame an Apocynaceae native of Brazilian Cerrado, known as white velame have been popularly used as depurative and anti-syphilitic agent. The aim of the present research was to develop a micropropagation protocol for the in vitro conservation of M. velame in a germplasm bank. Seeds of velame collected in Sacramento, Tapira and Araxá, MG, Brazil, were used as initial explants. Nodal segments from axenic plantlets were inoculated on MS/2 medium supplemented with different concentrations (0.25, 5.0 and 1.0mg L-1) of BAP; kinetin; 2iP or TDZ. For in vitro rooting , plantlets (2cm high) were inoculated on MS/2 medium supplemented with IBA or NAA (1.0, 5.0, and 10.0mg L-1), maintained for 5, 10 and 30 days and sub-cultured to MS/2 medium for an additional thirty days before evaluating rooting. For acclimatization and ex vitro rooting plantlets were transplanted into Styrofoam boxes containing either Plantmax®, sand and soil one by one or in combinations (1:1) of sand/Plantmax®; sand/soil; Plantmax®/soil. For the in vitro conservation of M. velame in germplasm bank plantlets (3.5cm high) were inoculated on MS/2 medium supplemented with either 2 percent sucrose + 4 percent of mannitol or sorbitol; 2 percent sucrose + 4 percent mannitol or sorbitol + 2mg L-1 calcium pantothenate; 2 percent of sucrose + 4 percent of mannitol or sorbitol + 2mg L-1 spermidine. The proportion of seed germination was considered low, 33 percent, 4 percent and 2 percent for seeds collected in Araxá, Tapira and Sacramento respectively. Explants cultured on MS/2 medium without addition of cytokinin showed enhanced height (5.2cm), increased number of buds (8.6), proliferation of 4 shoots per bud and minimal (4 percent) proportion of vitrification. Plantlets acclimatized ex vitro developed better in Plantmax® substrate, most plantlets presented root formation and survival reached 40 percent. M. velame plantlets cultured for three months on MS/2 added with 2 percent sucrose + 4 percent mannitol + 2mg L-1 of calcium pantothenate, under germoplasma bank conditions presented 40 percent of survival.