ABSTRACT
Fewer studies have assessed the outdoor cultivation of Spirulina maxima compared with S. platensis, although the protein content of S. maxima is higher than S. platensis. Spirulina growth medium requires an increased amount of NaHCO3, Na2CO3, and NaNO3, which increases the production cost. Therefore, the current study used a low-cost but high-efficiency biomass production medium (Medium M-19) after testing 33 different media. The medium depth of 25 cm (group A) was sub-divided into A1 (50% cover with a black curtain (PolyMax, 12 oz ultra-blackout), A2 (25% cover), and A3 (no cover). Similarly the medium depths of 30 and 35 cm were categorized as groups B (B1, B2, and B3) and C (C1, C2, and C3), respectively, and the effects of depth and surface light availability on growth and biomass production were assessed. The highest biomass production was 2.05 g L-1 in group A2, which was significantly higher (p < 0.05) than that in all other groups and sub-groups. Spirulina maxima died in B1 and C1 on the fifth day of culture. The biochemical composition of the biomass obtained from A2 cultures, including protein, carbohydrate, lipid, moisture, and ash, was 56.59%, 14.42%, 0.94%, 5.03%, and 23.02%, respectively. Therefore, S. maxima could be grown outdoors with the highest efficiency in urea-enriched medium at a 25-cm medium depth with 25% surface cover or uncovered.
Subject(s)
Biomass/analysis , Biomass/chemistry , Biomass/growth & development , Biomass/instrumentation , Biomass/metabolism , Biomass/methods , Culture Media/analysis , Culture Media/chemistry , Culture Media/growth & development , Culture Media/instrumentation , Culture Media/metabolism , Culture Media/methods , Culture Techniques/analysis , Culture Techniques/chemistry , Culture Techniques/growth & development , Culture Techniques/instrumentation , Culture Techniques/metabolism , Culture Techniques/methods , Spirulina/analysis , Spirulina/chemistry , Spirulina/growth & development , Spirulina/instrumentation , Spirulina/metabolism , Spirulina/methods , Urea/analysis , Urea/chemistry , Urea/growth & development , Urea/instrumentation , Urea/metabolism , Urea/methodsABSTRACT
Muestra la sinonimia, definición, datos epidemiológicos, etiopatogenia, cuadro clínico, estudio micológico, histopatología, laboratorio, diagnóstico diferencial, tratamiento y pronóstico de las micosis superficiales, subcutáneas, sistémicas y oportunistas
Subject(s)
Male , Female , Humans , Child , Adolescent , Adult , Dermatomycoses/classification , Mycology/education , Mycoses/drug therapy , Antifungal Agents/administration & dosage , Antifungal Agents/therapeutic use , Dermatomycoses/diagnosis , Dermatomycoses/drug therapy , Culture Media , Culture Media/methods , Mycology/history , Mycoses/diagnosis , Mycoses/etiologyABSTRACT
Muestra la sinonimia, definición, datos epidemiológicos, etiopatogenia, cuadro clínico, estudio micológico, histopatología, laboratorio, diagnóstico diferencial, tratamiento y pronóstico de las micosis superficiales, subcutáneas, sistémicas y oportunistas
Subject(s)
Humans , Male , Female , Child , Adolescent , Adult , Middle Aged , Mycology/education , Mycoses/drug therapy , Dermatomycoses/classification , Mycology/history , Mycoses/diagnosis , Mycoses/etiology , Dermatomycoses/diagnosis , Dermatomycoses/drug therapy , Antifungal Agents/administration & dosage , Antifungal Agents/therapeutic use , Culture Media/methods , Culture MediaABSTRACT
Presenta el manual de laboratorio elaborado para el Curso de Purificación y caracterización de antígenos de parásitos y Seminario de nuevas tendencias en la purificación de moléculas biológicas, realizado en el marco del Programa de Biotecnología para América Latina y el Caribe (PNUD/UNESCO/ONUDI), en la ciudad de Buenos Aires. Dirigido a técnicos y profesionales de la salud latinoamericanos relacionados con la investigación en la enfermedad de Chagas, leishmaniasis, malaria y toxoplasmosis, este manual tiene como objetivo ayudar al entrenamiento en la manipulación de parásitos desde el punto de vista genético, antigénico y bioquímico, e introducir las nuevas tendencias en la purificación de moléculas biológicas y sus aplicaciones a la obtención de antígenos de parásitos endémicos de la región. Desarrolla en sus varios capítulos, diversas técnicas y procedimientos: de bioseguridad en la manipulación de parásitos; de cultivos celulares, producción anticuerpos monoclonales, cultivo de células de insectos, fraccionamiento subcelular de Trypanosoma cruzi, cromatografía por afinidad, cromatografía líquida de alta presión, identificación y purificación de glicoconjugados usando lectinas, solubilización, extracción y caracterización de antígenos de Leishmania braziliensis, con detergentes, testeo de biblioteca geómica en el fago lambdo gt11 con sondas de anticuerpos, y, secuenciación de ácidos nucleicos (AU)
Subject(s)
Parasitic Diseases , Handbook , Accident Prevention/standards , Laboratories/standards , Antigens, Protozoan/isolation & purification , Culture Media/methods , Antibodies, Monoclonal/isolation & purification , Subcellular Fractions/methods , Trypanosoma cruzi/isolation & purification , Chromatography, Affinity/methods , Chromatography, High Pressure Liquid/methodsABSTRACT
Se describen los diversos métodos de diagnóstico de laboratorio de la enfermedad de Chagas, detallándose materiales requeridos, técnicas (reacciones y lecturas, en los diagnósticos inmunológicos), y las principales ventajas de cada método y su confiabilidad. Entre los métodos parasitológicos, se describen el método de concentración de Strout; el xenodiagnóstico; y el hemocultivo (seleccionándose el medio de Warren). Entre los métodos inmunodiagnósticos, se tratan: Reacción de Fijación de Complemento (técnica al 100% de hemólisis en tubo); Reacción de Fijación de Complemento (técnica al 100% de hemólisis en microplaca); Reacción de Hemaglutinación Cuantitativa (indirecta); Reacción de Hemaglutinación Semicuantitativa; Reacción de aglutinación con partículas de látex; Reacción de Aglutinación Rápida con Antígeno Flagelar (APAFLA): Reacción de Inmunofluorescencia Indirecta. En los Anexo, se tratan aspectos del cultivo de las formas epimastigotes de T. cruzi; de la preparación de antígenos para las reacciones inmunodiagnósticas; de los sueros controles; y, la titulación del antígeno de Fijación de Complemento (AU)
