Matrices tisulares: presentación de dos métodos sencillos y económicos de elaboración manual / Tissue arrays: Two simple and economical methods for manual construction

RESUMEN

OBJETIVOS: La tecnología de matrices tisulares (MTs) se ha implantado como método de trabajo habitual en la investigación de marcadores tisulares relacionados con el cáncer. Su inconveniente es la necesidad de contar con un dispositivo especial de precio elevado. Presentamos dos métodos manuales, económicos, que han sido válidos para construir MTs de pequeño y mediano formato. MATERIAL Y MÉTODOS: Se han elaborado 16 MTs de forma manual a partir de bloques convencionales de parafina, mediante dos técnicas diferentes. En la primera se utilizó una aguja Tru-Cut 16G a la que se cortó el bisel, para realizar los orificios en los bloques donantes (80 casos) y en los receptores (resultando dos MTs de 55 casos y dos de 25 casos). Para la segunda técnica se utilizó un dispositivo "punch" para biopsias cutáneas, de 4 mm de diámetro, que se aplicó a los bloques donantes (obteniendo 210 cilindros de 108 bloques) y a los receptores (12 MTs). En las secciones de las MTs obtenidas se realizaron tinciones de hematoxilina-eosina, inmunohistoquímica (IHQ) e hibridación in situ. RESULTADOS: La tasa de pérdida de material en las secciones obtenidas con el primer método fue del 26,5%, pero al haberse incluído dos cilindros de cada caso, al menos uno de ellos se conservó. En las MTs obtenidas con el método de punch biopsia no hubo pérdidas de tejido. Los resultados de todas las tinciones realizadas fueron óptimos. CONCLUSIONES: Estos dos métodos manuales de elaboración de MTs resultan relativamente sencillos y son económicos. La tasa de pérdida de tejido es sólo significativa en el primero de los métodos pero se puede compensar incluyendo varios cilindros de cada bloque donante. En el segundo método no han existido problemas destacables en la fase de microtomía

ABSTRACT

OBJECTIVES: Tissue array (TA) technology is widely used as a method for the in situ investigation of tissue markers in cancer studies. A limitation of this technique is the high price of tissue arrayers. We describe two easy and non-expensive manual methods, that haveproduced small and medium format arrays. MATERIAL AND METHODS: 16 TAs were manually constructed from conventional paraffin blocks using two different techniques. For the first method, a 16G Tru-Cut needle whose bevel edge had been cut, was used to make the holes in the donor blocks (80 cases) and the receptor ones (resulting in 2 TAs each one with 55 cases and two with 25 cases). In the second technique, a 4 mm-diameter punch for cutaneous biopsies was applied to the donor blocks (obtaining 210 cylinders from 108 blocks) and to the receptor ones (12 TAs). Hematoxylin-eosin, immunohistochemical and in situ hybridization stains were performed on sections from these TAs. RESULTS: The tissue loss rate in the sections obtained from the TAs constructed with the first method was 26.5%, but as two cylinders were included from each case, at least one of them was retained. There was not any loss of tissue in the sections from the TAs constructed with the second method. The results of all of the stains performed were successful. CONCLUSIONS: These two manual methods of elaboration of TAs result rather simple and they are economical. The tissue loss rate is significant in the first method but it can be compensated embedding more than one cylinder from each donor block. There was not any problem in the sectioning of the TAs constructed with the second method: