ABSTRACT
La patogénesis de la lesion renal ha sido relacionada a la miolisis, hemólisis, hipotensión y/o el efecto directo del veneno. Tanto el cultivo primario o el cultivo celular continuo proveen una alternativa in vitro para la evaluación cuantitativa de la toxicidad de venenos de serpiente. El veneno crudo de Crotalus vegrandis fue fraccionado por una cromatografía de exclusión molecular. La toxicidad del veneno crudo de C. vegrandis, sus fracciones hemorrágicas y neurotóxicas fueron evaluadas en células renales primarias de ratón y una línea continua de células Vero mantenidas in vitro. Las células fueron aisladas de la corteza renal murina y se cultivaron en placas de 96 pozos con medio Dulbecco (DMEM). Allí fueron tratadas con el veneno crudo y sus fracciones. Las células de la corteza renal murina tuvieron una morfología de células epiteliales y la mayoría se tiñeron con un anticuerpo anti-músculo actina. La citotoxicidad fue evaluada por el método colorimétrico del tetrazolium. La viabilidad de las células fue menor en las células tratadas con el veneno crudo, seguida por la fracción hemorrágica y neurotóxica, con un CT50 de 4.93, 18.41 y 50.22 µg/mL, respectivamente. Los cultivos de células Vero parecieron ser más sensibles con un CT50 de 2.9 y 1.4 µg/mL para el veneno crudo y el pico hemorrágico, respectivamente. Los resultados de este estudio muestran la potencialidad de usar sistemas de cultivo celular para evaluar la toxicidad de los venenos.
Subject(s)
Animals , Male , Mice , Cell Culture Techniques , Crotalus , Crotalid Venoms/toxicity , Kidney Cortex/cytology , Toxicity Tests/economics , Cell Culture Techniques , Chlorocebus aethiops , Chromatography, Gel , Kidney Cortex/drug effects , Toxicity Tests/methods , Vero CellsABSTRACT
Phospholipase D (PLD) is an enzyme involved in signal transduction and widely distributed in mammalian cells. The signal transduction pathways and role for phospholipid metabolism during hormonal response in cortical collecting duct remain partly undefined. It has been reported that dexamethasone increases transepithelial transport in M-1 cells that are derived from the mouse cortical collecting duct. We investigated the expression and activity of PLD in M-1 cells. Basal PLD activity of M-1 cells cultured in the presence of dexamethasone (5 microM) was higher than in the absence of dexamethasone. Dexamethasone and ATP activated PLD in M-1 cells but phorbol ester did not stimulate PLD activity. Vasopressin, bradykinin, dibutyryl cyclic AMP, and ionomycin were ineffective in activating PLD of the cells. The PLD2 isotype was detected by immunoprecipitation but PLD1 was not detected in M-1 cells. Addition of GTPgammaS and ADP-ribosylation factor or phosphatidylinositiol 4,5-bisphosphate to digitonin-permeabilized cells did not augment PLD activity. In intact cells PLD activity was increased by sodium oleate but there was no significant change between dexamethasone treated- and untreated cells by oleate. These results suggest that at least two types of PLD are present in M-1 cells and PLD plays a role in the corticosteroid-mediated response of cortical collecting duct cells.